論文の概要: Holographic Cell Stiffness Mapping Using Acoustic Stimulation

• arxiv url: http://arxiv.org/abs/2102.07480v1
• Date: Mon, 15 Feb 2021 11:38:21 GMT
• ステータス: 翻訳完了
• システム内更新日: 2021-02-16 15:17:11.965671
• Title: Holographic Cell Stiffness Mapping Using Acoustic Stimulation
• Title（参考訳）: 音響刺激を用いたホログラフィック細胞剛性マッピング
• Authors: Rahmetullah Varol, Sevde Omeroglu, Zeynep Karavelioglu, Gizem Aydemir, Aslihan Karadag, Hanife Ecenur Meco, Gizem Calibasi Kocal, Muhammed Enes Oruc, Gokhan Bora Esmer, Yasemin Basbinar, Huseyin Uvet
• Abstract要約: 本研究では,高分解能かつリアルタイムに細胞膜上の剛性分布が得られるホログラフィック単細胞剛性測定手法を提案する。 HCT116 (Human Colorectal Carcinoma) 細胞およびCTCによるHCT116細胞に対するTGF-beta(Transforming Growth factor-beta)による誘導法の提案手法を実証する。 以上の結果から, CTCを介するHCT116細胞は, 血管内への接着能を失い, 転移することが明らかとなった。 彼らはまた、がん細胞の付着形態と比較してより柔らかい剛性プロファイルを示す。
• 参考スコア（独自算出の注目度）: 0.3539070690240802
• License: http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
• Abstract: Accurate assessment of stiffness distribution is essential due to the critical role of single cell mechanobiology in the regulation of many vital cellular processes such as proliferation, adhesion, migration, and motility. Cell stiffness is one of the fundamental mechanical properties of the cell and is greatly affected by the intracellular tensional forces, cytoskeletal prestress, and cytoskeleton structure. Herein, we propose a novel holographic single-cell stiffness measurement technique that can obtain the stiffness distribution over a cell membrane at high resolution and in real-time. The proposed imaging method coupled with acoustic signals allows us to assess the cell stiffness distribution with a low error margin and label-free manner. We demonstrate the proposed technique on HCT116 (Human Colorectal Carcinoma) cells and CTC-mimicked HCT116 cells by induction with transforming growth factor-beta (TGF-\b{eta}). Validation studies of the proposed approach were carried out on certified polystyrene microbeads with known stiffness levels. Its performance was evaluated in comparison with the AFM results obtained for the relevant cells. When the experimental results were examined, the proposed methodology shows utmost performance over average cell stiffness values for HCT116, and CTC-mimicked HCT116 cells were found as 1.08 kPa, and 0.88 kPa, respectively. The results confirm that CTC-mimicked HCT116 cells lose their adhesion ability to enter the vascular circulation and metastasize. They also exhibit a softer stiffness profile compared to adherent forms of the cancer cells. Hence, the proposed technique is a significant, reliable, and faster alternative for in-vitro cell stiffness characterization tools. It can be utilized for various applications where single-cell analysis is required, such as disease modeling, drug testing, diagnostics, and many more.
• Abstract（参考訳）: 増殖、接着、移動、運動などの多くの重要な細胞プロセスの調節における単細胞力学の重要な役割のために、剛性分布の正確な評価が不可欠です。 細胞硬度は細胞の基本的な機械的性質の1つであり、細胞内張力、細胞骨格プレストレス、細胞骨格構造に大きく影響を受ける。 本論文では,高分解能かつリアルタイムに細胞膜上の剛性分布を得ることができるホログラフィック単細胞剛性測定手法を提案する。 音響信号と結合した撮像法により, 誤差マージンが低く, ラベルフリー方式で細胞剛性分布を評価することができる。 HCT116(Human Colorectal Carcinoma)細胞とCTCによるHCT116細胞に対して,TGF-\b{eta}(Transforming Growth factor-beta)による誘導法を提案する。 提案手法の検証研究は, 既知剛性を有するポリスチレン系マイクロビーズを用いて行った。 その性能は, 関連細胞に対して得られたAFM結果と比較して評価した。 実験結果を検討したところ,HCT116の平均細胞剛性値に対して最大性能を示し,CTCによるHCT116細胞は1.08kPa,0.88kPaであった。 その結果、CTCによるHCT116細胞は、血管循環に入り転移する接着能力を失います。 彼らはまた、がん細胞の付着形態と比較してより柔らかい剛性プロファイルを示す。 したがって,本手法は生体内細胞剛性評価ツールの重要かつ信頼性が高く,より高速な代替手段である。 病気のモデリング、薬物検査、診断など、単細胞分析が必要な様々な用途に利用することができる。

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